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Pruebas de amplificación
de ácidos nucleicos
Resumen científico
Mothershed EA, Whitney AM. Nucleic acid-based methods
for the detection of bacterial pathogens: present and future considerations
for the clinical laboratory. Clin Chim Acta 2006; 363(1-2):206-20.
Recientes avances en los métodos basados en ácidos
nucleicos para detectar bacterias ofrecen una sensibilidad y una
especificidad mayores que las técnicas microbiológicas
tradicionales. El beneficio potencial de las pruebas basadas en
ácidos nucleicos para el laboratorio clínico es el
tiempo reducido de diagnóstico, un alto rendimiento y resultados
exactos y confiables. Diversas pruebas de PCR e hibridación
están disponibles comercialmente para la detección
de organismos específicos. Más aún, cientos
de pruebas de detección bacteriana basados en ácidos
nucleicos han sido publicados en la literatura y han podido adaptarse
para uso en instalaciones clínicas. Sin embargo, la potencial
contaminación, la falta de estandarización o validación
para algunos ensayos, la interpretación compleja de los resultados
y el aumento en el costo son posibles limitaciones de estas pruebas
y deben considerarse cuidadosamente antes de ser implementadas en
el laboratorio clínico. En conclusión: existe un área
principal de avance en el desarrollo de pruebas basadas en ácidos
nucleicos para la detección específica y de amplio
rango de patógenos bacterianos.
¿Cuál es el término?
1. Técnica in vitro para producir grandes
cantidades de fragmentos específicos de ADN o ARN de longitud
y secuencia definidas a partir de pequeñas cantidades de
secuencias cortas flanqueadoras oligonucleótidas (primers).
Los pasos esenciales incluyen desnaturalización termal de
las moléculas diana de doble cadena, reasociación
de los primers con sus secuencias complementarias y extensión
de los primers reasociados mediante síntesis enzimática
con ADN polimerasa. La reacción es eficiente, específica
y extremadamente sensible. Entre los usos de la reacción
está el diagnóstico de enfermedades, detección
de patógenos difíciles de aislar, análisis
de mutaciones, pruebas genéticas, secuenciación del
ADN y el análisis de relaciones evolutivas. [Definición
tomada de MeSH/DeCS].
2. Variación de la técnica anterior,
en la que el cADN se hace del ARN mediante transcripción
inversa. El cADN resultante se amplifica usando los protocolos estándares
de la técnica anterior. [Definición tomada de MeSH/DeCS].
3. Técnica de amplificación de ADN
basada en la ligación de sondas de oligonucleótidos.
Las sondas son proyectadas para compatibilizar exactamente dos secuencias
adyacentes de una marca específica de ADN. La reacción
en cadena es repetida en tres pasos en la presencia de sonda extra:
1) desnaturación por calor de ADN de doble filamento, 2)
templado de sondas para marcar ADN y 3) unión de las sondas
por ADN ligasa termoestable. Después que la reacción
es repetida por 20-30 ciclos se mide la producción de sondas
ligadas. [Definición tomada de MeSH/DeCS].
4. Proceso isotérmico de amplificación
de nucleotidos in vitro. El proceso implica la acción concomitante
de una polimerasa de ADN dirigido por ARN, una ribonucleasa y una
polimerasa de ARN dirigido por ADN para sintetizar grandes cantidades
de secuencias de moléculas de ARN y ADN específicas.
También se conoce como replicación de secuencia autosostenida.
[Definición tomada de MeSH/DeCS].
5. Método de amplificación isotérmico
que puede usarse como objetivo tanto de ADN como de ARN. Utiliza
la transcripción de ARN (ARN polimerasa) y la síntesis
de ADN (transcriptasa reversa) para producir un amplicón
ARN de un ácido nucleico objetivo. Dado que el ARN es más
lábil que el ADN en el ambiente del laboratorio, esta característica
disminuye la posibilidad de contaminación por carry-over.
El método produce 100-1000 copias por ciclo comparadas con
las técnicas 1 y 3 que sólo producen 2 copias por
ciclo, es decir un incremento de 10.000 millones de veces más
copias en aproximadamente 15-30 minutos. [Definición traducida
del artículo de Mothershed y Whitney (7)].
6. Es un sistema de amplificación de sonda
isotérmica para detección del ADN objetivo que utiliza
sonda quimérica ARN-ADN (secuencia de ARN flanqueada por
dos secuencias de ADN) para hibridizar una región específica
de un gen amplificado. Una vez hibridizada, la parte interna del
ARN de la sonda es clivada por RNasa H, que reconoce específicamente
el dúplex ARN-ADN. Una vez que la prueba es clivada, el tinte
reportero (reporter dye) y el tinte extintor (quencher dye) de cada
lado de la sonda se separan y se emite una señal fluorescente
que aumenta proporcionalmente a medida que la sonda es clivada,
permitiendo la medición del producto amplificado. [Definición
traducida del artículo de Mothershed y Whitney (7)].
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MeSH: Medical subject headings. Bethesda: National Library of Medicine,
2006.
NOTA
Para solicitar los artículos anteriores o la solución
del acróstico,
por favor comuníquese con el SACT a mail: bibliote@fbpba.org.ar
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