Comparación
de 3 métodos para detectar antígenos de rotavirus
en materia fecal
El Comité de Redacción
de Acta Bioquímica Clínica Latinoamericana ha seleccionado
este artículo publicado en INFORME ALAC – Ciencia y
Ética, Año XI, Nº 2, 2006) para su difusión
a través de FABA Informa
Valeria Cuffia - Natalia Guerra
- María Díaz Ariza - Ximena
Maldonado - Patricia Córdoba.
Laboratorio 1, Departamento de Investigación. IUCS Fundación
Barceló. Sede La Rioja.
Introducción
Las gastroenteritis virales agudas son una de las principales causas
de morbilidad y mortalidad infantil en todo el mundo (1). Los principales
agentes virales son Rotavirus, Calicivirus (Virus tipo Norwalk y
tipo Sapporo), Astrovirus y Adenovirus entericos (serotipos 40 y
41 ), y con menor trascendencia epidemiológica Coronavirus,
Torovirus, Picobirnavirus y Picornavirus (virus Aichi) (2).
Rotavirus es el mayor agente causal de gastroenteritis en niños,
produciendo por año aproximadamente 111 millones de episodios,
de los cuales 25 millones requieren vistas clínicas, 2 millones
de hospitalizaciones y alrededor de 400.000 muertes anuales en el
mundo (3). En la Argentina se ha estimado que las diarreas virales
infantiles provocan 21.000 hospitalizaciones, 85.000 atenciones
ambulatorias y un costo mayor a los 27 millones de dólares
(4). En la provincia de La Rioja la diarrea es una de las principales
causas de consulta y el diagnóstico de las diarreas virales
no se realiza en los laboratorios públicos ni privados. Nuestro
grupo de trabajo determinó que el 13,17% de las consultas
por diarreas y el 23,13% de las diarreas en hospitalizados son producidas
por virus. De las diarreas virales, las producidas por Rotavirus
son 81,2% en niños ambulatorios y 82% en hospitalizados (5).
Rotavirus fue observado por primera vez en 1973 en la mucosa duodenal
de niños con gastroenteritis. Es un virus de la familia Reoviridae
y las partículas maduras son icosahédricas, no envueltas
y de 70 nm de diámetro. La cápside contiene una doble
capa proteica. La capa externa está compuesta por dos proteínas
estructurales, VP7 y VP4 y la capa interna está formada principalmente
por VP6. El genoma viral comprende 11 segmentos de ARN de doble
cadena y cada segmento genómico codifica para proteínas
estructurales y no estructurales. Las proteínas estructurales
son VP1, VP2, VP3, VP4, (VP5 + VP8), VP6 y VP7 y las no estructurales
NSP1, NSP2, NSP3, y NSP5 (1).
Los Rotavirus son clasificados en grupos, subgrupos y serotipos
de acuerdo a la reacción antigénica de las proteínas
de la cápside. La proteína VP6 es responsable de la
existencia de 7 grupos (A-G). El grupo A se divide en 2 subgrupos
(I, II) en función de su especificidad. Las infecciones humanas
son producidas principalmente por el grupo A, y en menor medida
por los grupos B y C. La proteína VP4 que constituye las
espículas del virión y la glucoproteína VP7
de la cápside externa determinan la existencia de serotipos
o genotipos P y G, respectivamente (2). Los serotipos o genotipos
se determinan de acuerdo al método usado para la tipificación
con un panel de anticuerpos para serotipos por RT-PCR para genotipos.
Se han identificado hasta el momento 15 genotipos G y 20 genotipos
P (6).
Rotavirus puede ser detectado en materia fecal por diversos métodos.
Originalmente el microscopio electrónico y la inmunomicroscopía
electrónica fueron usados para la detección morfológica
e inmunológica de las partículas virales (2). El diagnóstico
de la infección por Rotavirus se realiza detectando la presencia
de antígeno vírico por métodos inmunológicos
en muestras de materia fecal. Estos métodos detectan Rotavirus
del grupo A. Actualmente en el mercado se encuentran disponible
equipos de Enzimoinmunoensayo (Elisa IVD Inc. Rotavirus antigen
detection, Rotazyme II Abbott Laboratorios, Premier Rotaclone),
ensayos de Inmunocromatografía (Rotascreen dipstick, VIKIA
Rota-Adeno) y pruebas de aglutinación de partículas
de látex sensibilizadas (Slidex Rota Kit 2, Biomerieux);
este último estuvo disponible en el mercado hasta 2004. Los
métodos moleculares detectan la presencia del ARN vírico.
Uno de estos métodos es el PAGE (electroforesis en gel de
poliacrilamida) que pone de manifiesto los segmentos de ARN bicatenario
y es la técnica patrón para la detección de
Rotavirus. Otro de estos métodos es RT- PCR (transcriptasa
reversa, reacción en cadena de la polimerasa), pero su uso
aún no es recomendado para el diagnóstico (2).
Tabla 1. Sensibilidad y Especificidad
del ELISA y la IC, utilizando la técnica PAGE como patrón
N: 83 |
PAGE (+) |
PAGE (-) |
TOTAL |
Elisa (+) |
VP n: 4 |
FP n: 7 |
11 |
Elisa (-) |
FN n: 0 |
VN n: 72 |
72 |
TOTAL |
4 |
79 |
83 |
Inmunocromatografía (+) |
VP n: 4 |
FP n: 2 |
6 |
Inmunocromatografía (-) |
FN n: 0 |
VN n: 77 |
77 |
TOTAL |
4 |
79 |
83 |
VP: Verdaderos positivos -
VN: Verdaderos Negativos - FP: Falsos Positivos -
FN: Falsos Negativos
Tabla 2 Indice de concordancia entre ELISA e IC
N: 83 |
ELISA + |
ELISA - |
Total |
IC + |
6 |
0 |
6 |
IC - |
8 |
69 |
77 |
Total |
14 |
69 |
83 |
Cada una de estas
técnicas tiene perfiles de utilidades diferentes por lo que
es importante contar con una marcha diagnóstica para detectar
Rotavirus en las diarreas infantiles, que son relevantes en nuestra
región. El presente trabajo tiene como objetivo comparar
tres métodos diagnósticos disponibles comercialmente
para detectar infección por Rotavirus en materia fecal y
establecer la utilidad diagnóstica de los mismos.
Las gastroenteritis virales
agudas son una de las principales causas de morbilidad y mortalidad
infantil en todo el mundo. Rotavirus es el principal agente
causal. El diagnóstico se realiza detectando la presencia
de antígeno vírico por métodos inmunológicos
en muestras de materia fecal. Cada técnica tiene perfiles
de utilidad diferentes por lo que es importante contar con
una marcha diagnóstica para detectar Rotavirus en las
diarreas infantiles. |
Materiales y métodos
Se recolectaron 83 muestras de materia fecal de niños menores
de 5 años con diarrea aguda que consultaron en el servicio
externo de pediatría del Hospital Vera Barros, en el Centro
primario Puerta de La Quebrada y en el Centro primario San José
de la Capital de la provincia de La Rioja. Las muestras fueron recolectadas
en recipientes limpios y secos sin conservante, dentro de las 48
horas de aparición de los síntomas y conservadas a
-20° C hasta el momento de procesarlas.
Procesamiento de las muestras
Las muestras de materia fecal fueron procesadas por el método
de enzimoinmunoensayo (ELISA) sandwich que utiliza anticuerpos monoclonales
contra rotavirus del grupo A (ELISA IVD Ir Rotavirus antigen detection),
por Inmunocromatografia (IC) (Roascreen Dipstick) que también
detecta rotavirus del Grupo A, utilizando un anticuerpo monoclonal
diferente al del ELISA y por electroforesis en gel de poliacrilamida
(PAGE), previa extracción del ácido nucleico por el
método de Pindall, con tinción de nitrato de plata
para visualizar los segmentos del ARN viral (perfiles electroforéticos)
(7).
Resultados
De las 83 muestras procesadas, 4 fueron positivas y 68 negativas
por los tres métodos, con un índice de concordancia
del 83,7%. La tabla 1 muestra la sensibilidad y especificidad del
ELISA y la IC utilizando el PAGE como técnica patrón.
La sensibilidad determinada para el ELISA fue del 100% y la especificidad
del 91%. La IC tuvo una sensibilidad del 91% y una especificidad
del 100%.
Cabe destacar que procesando en serie a las muestras ELISA negativas
por el método IC, se obtiene una sensibilidad y especificidad
del 100% optimizando el diagnóstico de Rotavirus en materia
fecal de niños. El índice de concordancia encontrado
entre ELISA e IC fue del 90,36% con un valor predictivo negativo
para el ELISA del 89,6%; estos datos se observan en la tabla 2.
Discusión
Rotavirus humano es considerado el mayor agente etiológico
de diarreas agudas en niños en todo el mundo. Nosotros determinamos
en estudios anteriores que en la provincia de La Rioja es el principal
virus causante de diarreas agudas. Un diagnóstico rápido,
fácil y certero es esencial para un efectivo tratamiento
de los pacientes. La implementación del diagnóstico
de rutina para Rotavirus en los hospitales públicos y laboratorios
privados permitiría optimizar la asignación de los
recursos económicos, por el uso indebido de antibióticos
y por la infección intrahospitalaria ocasionada por este
virus.
En el laboratorio clínico, los métodos inmunológicos
son de gran utilidad para la resolución de un diagnóstico
de diarrea por Rotavirus, debido a su simpleza en relación
a las técnicas moleculares que requieren un laboratorio de
alta complejidad.
Nosotros obtuvimos, utilizando ELISA como técnica diagnóstica,
un 100% de sensibilidad y un 91% de especificidad. Estos resultados
muestran que esta técnica es muy sensible para determinar
Rotavirus en materia fecal, aunque requiere un mayor tiempo de procesamiento
de la muestra, un laboratorio más equipado y un personal
más entrenado. El ELISA es un método muy usado para
el diagnóstico de Rotavirus y fue comparado con diferentes
métodos como RT-PCR (8)(9), Microscopía Electrónica
(l0), látex (11-15), Inmunocromatografía (8)(13)(16)
y por PAGE (l0-12) obteniendo resultados similares a los nuestros.
Utilizando la IC como método diagnóstico obtuvimos
una especificidad del 100% y una sensibilidad del 91%, que aumenta
al 100% procesando las muestras en serie con ELISA sandwich. Estos
resultados indican que la IC tiene una alta sensibilidad y especificidad,
es rápida, fácil de realizar e interpretar, constituyendo
una técnica accesible para los laboratorios clínicos
de todo tipo de complejidad. Actualmente la IC es un método
tan utilizado como el ELISA, confirmado a través de estudios
comparativos realizados por otros autores (13)(16-19) donde obtienen
una buena sensibilidad y especificidad para el diagnóstico
con resultados similares a los nuestros.
En conclusión, este trabajo muestra que para establecer un
diagnóstico de Rotavirus a un costo accesible se puede usar
la IC por su buena sensibilidad y especificidad, por la simpleza
del procedimiento e interpretación de los resultados.
Agradecimiento
Este proyecto fue realizado con un subsidio otorgado por la Fundación
Barceló H. A. de Sede La Rioja. Se agradece la valiosa colaboración
a todos los Bioquímicos y técnicos de laboratorio
del Hospital Vera Barros, a los residentes de Pediatría,
a las autoridades del Hospital Vera Barros, a las autoridades de
Salud Pública de la Provincia.
Bibliografía
>
1. Wilhelmi I, Roman E, Sanchez-Fauquier A. Viruses causing gastroenteritis.
Clin Microbiol lnfect. Review. 2003 Apr; 9(4):247-62.
> 2. Buesa Gomez J. The new diagnostic
technologies. An Esp Pediatr. 1989 Sep;31 Suppl 38:139-44.
> 3. Robert F. Ramig. Pathogenesis
of Intestinal and Systemic Rotavirus Infection Journal of Virology,
October 2004, p. 10213-10220, Vol. 78, No.19.
> 4. Bok K, Castagnaro NC, Diaz NE,
Borsa A, Cagnoli MR, Nates, Yudowsky S, Espul C, Cuello H, Fay O,
Brunet B, Ues OC, Santoro R, Grinstein S, Gonzalez F, Miceli I,
Gomez JA. Rotavirus laboratory network: results after one year of
observation. Rev Argent Microbiol 1999 Jan-Mar; 31(1):1-12.
> 5. Guerra NM, Cuffia V, Maldonado
X, Diaz Ariza M, Cordoba P. Caracterizacion de diarreas virales
en La Rioja. VIII Congreso Argentino de Virología 2005. Revista
Argentina de Microbiología p 67; vol 37 supl 1 2005.
> 6. Cláudia Regina N. E.
da Luz; Joana D’Arc P. Mascarenhas; Yvone B. Gabbay; Ana Regina
B. Motta; Telma Vitorina Ribeiro Lima; Luana da S. Soares; Alexandre
C. Lindares. Rotavirus serotypes and electropherotypes identified
among hospitalised children in São Luís, Maranhão,
Brazil Rev. Inst. Med. trop. S. Paulo vol.47 no.5 São Paulo
Sept. /Oct. 2005.
> 7. Giordano MO, Basnec SN, Nates
SV, Bennum F, Depetris AR. Rapid techniques for diagnostic and epidemiological
studies of rotavirus infection. J of Virol Meth. Vol 35. 1991. p
59-63.
> 8. Gunson RN, Miller J, Leonard
A, Carman WF. Importance of PCR in the diagnosis and understanding
of rotavirus illness in the community. Commun Dis Public Health.
2003 Apr;6(1):63-5.
> 9. Roman E, Martinez I. Detection
of rotavirus in stool samples of gastroenteritis patients. P R Health
Sci J. 2005 Sep;24(3):179-84.
> 10. Chen Y, Zhao J, Yan L. Comparison
of three methods in detection of rotavirus infection in neonates.
Zhonghua Shi Yan He Lin Chuang Bing Du Xue Za Zhi. 1999 Jun 30;13(2):180-2.
> 11. Paul SK, Tabassum S, Islam
MN, Ahmed MU, Haq JU, Shamsuzzaman AK. Diagnosis of human rotavirus
in stool specimens: comparison of different methods. Mymensingh
Med J. 2006 Jul;15(2):183-7.
> 12. Altindis M, Yavru S, Simsek
A, Ozkul A, Ceri A, Koc H. Rotavirus infection in children with
acute diarrhea as detected by latex agglutination, ELISA and polyacrylamide
gel electrophoresis. Indian Pediatr. 2004 Jun;41(6):590-4.
> 13. Wilhelmi I, Colomina J, Martin-Rodrigo
D, Roman E, Sanchez-Fauquier A. New immunochromatographic method
for rapid detection of rotaviruses in stool samples compared with
standard enzyme immunoassay and latex agglutination techniques.
Eur J Clin Microbiol lnfect Dis. 2001 Oct; 20( l0):741-3.
> 14. Raboni SM, Nogueira MB, Hakim
VM, Torrecilha VT, Lerner H, Tsuchiya LR. Comparison of latex agglutination
with enzyme immunoassay for detection of rotavirus in fecal specimens.
Am J Clin Pathol. 2002 Mar;117(3):392-4.
> 15. Pazdiora P, Svecova M, Jelinkova
H, Taborska J. Diagnosis of rotavirus infections-comparison of various
methods Epidemiol Mikrobiol lmunol. 2002 Aug; 51(3):95-7.
> 16. Regagnon C, Chambon M, Archimbaud
C, Charbonne F, Demeocq F, Labbe A, Aumaitre O, Ughetto S, Peigue-Lafeuille
H, Henquell C. Rapid diagnosis of rotavirus infections: comparative
prospective study of two techniques for antigen detection in stool.
Pathol Biol (Paris). 2006 Jul;54(6):343-6. Epub 2006 Feb 14.
> 17. Kurokawa M, Ono K, Ishiyama
S, Rai SK. Evaluation of rapid diagnostic methods for pediatric
viral diarrhea using samples collected in Nepal and Japan. Nepal
Med Coll J. 2004 Dec; 6(2):78-82.
> 18. Shimizu H, Li L, Mitamura K,
Okuyama K, Hirai Y, Ushijima H. Evaluation of immunochromatography
based rapid detection kit of rotavirus and adenovirus. Kansenshogaku
Zasshi. 2001 Dec; 75(12):1040-6.
> 19. Kojima T, Arai M, Sadamoto
S, Ikedo M, Yui I. Evaluation of the diagnostic reagents which detect
group A Streptococcus with the immunochromatographical method. Rinsho
Biseibutshu Jinsoku Shindan Kenkyukai Shi. 2002; 12(2):91-5.
|
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